长寿花胚性愈伤组织的诱导及胚状体再生

园艺学报 ›› 2004, Vol. 31 ›› Issue (2): 249-252.

长寿花胚性愈伤组织的诱导及胚状体再生

陈超;王桂兰;田立民;崔瑞生

(唐山师范学院生物科学技术系，唐山063000)

收稿日期:2003-06-23 修回日期:2003-10-08 出版日期:2004-04-25 发布日期:2004-04-25

Embryoid Induction and Regeneration in Callus of Kalanchoe blossfeldiana

Chen Chao;Wang Guilan;Tian Limin;Cui Ruisheng

(Department of Biological Science and Technology，Tangshan Teacher's College，Tangshan 063000，China)

Received:2003-06-23 Revised:2003-10-08 Online:2004-04-25 Published:2004-04-25

摘要/Abstract

摘要： 研究了长寿花胚性愈伤组织的筛选，胚状体的诱导发生、发育过程及植株再生。经过对外观
及细胞学观察，看出外观质地疏松、颗粒状的淡黄色愈伤组织细胞圆形且形状规则，是胚性愈伤组织。诱导胚性愈伤组织的最适培养基为：MS+2，4-D 2 mg·L^-1 +BA 0.2 mg·L^-1；胚状体的诱导培养基为MS+BA 2 mg·L^-1 +NAA 0.2 mg·L^-1 +活性炭4 g·L^-1+蔗糖30 g·L^-1，胚状体诱导率可达185个胚状体；胚状体的再生培养基为MS+蔗糖30 g·L^-1。利用石蜡切片对胚状体的发生过程进行了观察。

关键词: 长寿花, 胚性愈伤组织, 胚状体, 再生

Abstract: The study aimed on the selection of embryonic callus of Kalanchoe blossbeldiana，the induction of embryoid，morphogenesis of embryoid and regeneration．The grain-like，light yellow and loose callus was embryonic callus. During the inducing of embryoid，the culture mediums with different growth regulator concentration were used．Finally the culture medium with the highest of reduction frequency was MS+BA 2 mg·L^-1+NAA 0.2 mg·L^-1+Sucrose 30 g·L^-1 +Active carbon 4 g·L^-1 (185 embryoid per gram)．The regeneration medium Was MS+Sucrose 30 g·L^-1．The appearance and growing of embryoid were also observed through parafin slices of callus．The development procedure of embryoid Was procel of embryoid，globular stage，heart-shape stage and cotyledonary stage

Key words: Kalanchoe blossfeldiana, Embryonic callus, Embryoid, Regeneration

中图分类号:

S 68

陈超;王桂兰;田立民;崔瑞生. 长寿花胚性愈伤组织的诱导及胚状体再生[J]. 园艺学报, 2004, 31(2): 249-252.

Chen Chao;Wang Guilan;Tian Limin;Cui Ruisheng. Embryoid Induction and Regeneration in Callus of Kalanchoe blossfeldiana[J]. ACTA HORTICULTURAE SINICA, 2004, 31(2): 249-252.

[1]	刘蓉, 慈惠婷, 任秀霞, 高洁, 王顺利, 张秀新. ‘凤丹’牡丹幼胚愈伤组织诱导的优化和再生体系的建立[J]. 园艺学报, 2022, 49(1): 166-174.
[2]	王团团, 缑晨星, 夏磊, 朱拼玉, 李季, 陈劲枫. 黄瓜10个基因型材料外植体内源激素水平及比例对其离体再生的影响[J]. 园艺学报, 2021, 48(9): 1731-1742.
[3]	于波1，黄丽丽1，朱玉2，朱根发1，孙映波1,*. 朱顶红幼嫩花梗胚性愈伤组织诱导和高效植株再生[J]. 园艺学报, 2020, 47(5): 907-915.
[4]	雅蓉1，徐伟荣2,3,4,5,*，张莹1，夏思琪2，张宁波2,3,5. 褪黑素对‘无核白’葡萄体细胞胚的诱导作用[J]. 园艺学报, 2020, 47(5): 953-962.
[5]	周霞 1，张璐 1，周俊国 2，邓英 3，王怡 1，娄群峰 1，陈劲枫 1,*. 黄瓜未授粉子房离体培养获得胚囊再生植株[J]. 园艺学报, 2020, 47(3): 455-466.
[6]	王春夏，张梦迪，王锦霞，王志平，孙红梅. 朱顶红无菌苗叶片高效再生体系[J]. 园艺学报, 2020, 47(2): 301-309.
[7]	刘星月, 朱强龙, 李慧英, 孙静宇, 李必聪, 张宏玉, 黄英金, 方加军, 周庆红, . 红芽芋脱毒试管芋诱导及植株再生[J]. 园艺学报, 2020, 47(12): 2427-2438.
[8]	梁玲鸽，杨霞，王浩，李政，李名扬，郭余龙*. 超量表达PhWRIL1基因抑制矮牵牛叶片外植体再生不定芽[J]. 园艺学报, 2018, 45(10): 1961-1969.
[9]	李坤坤，徐昌杰*. 蔷薇科果树离体再生与遗传转化研究进展[J]. 园艺学报, 2017, 44(9): 1633-1644.
[10]	肖望，涂红艳，张爱玲. 白姜花胚性愈伤组织的诱导与植株再生体系的建立[J]. 园艺学报, 2016, 43(8): 1605-1612.
[11]	雷颖, 任一杰, 沈晓燕. 松潘乌头嫩茎高效再生体系的建立[J]. 园艺学报, 2015, 42(7): 1393-1399.
[12]	于波，刘金梅，刘晓荣，刘小飞，廖飞雄. 白鹤芋胚性细胞悬浮培养和高效植株再生体系的建立[J]. 园艺学报, 2015, 42(4): 721-730.
[13]	邹雪，肖乔露，文安东，胡芳，黄雪丽，王西瑶. 通过体细胞无性系变异获得马铃薯优良新材料[J]. 园艺学报, 2015, 42(3): 480-488.
[14]	涂红艳, 肖望, 邓崇会. 红姜花体细胞胚胎发生及植株再生的研究[J]. 园艺学报, 2014, 41(10): 2139-2146.
[15]	任芳，董雅凤*，张尊平，范旭东，胡国君，朱红娟. 葡萄抗病毒转基因研究进展[J]. 园艺学报, 2013, 40(9): 1633-1644.